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新型納米仿生骨植入材料的生物相容性的初步研究

陳建洪

【摘要】 研究新型納米仿生骨植入材料的生物相容性。 【方法】 采用骨髓基質細胞體外培養技術,通過MTT法檢測細胞相對增殖度,對材料的細胞毒性進行分級評價,并采用直接接觸培養法,觀察細胞在材料上的黏附與散布。 【結果】 材料的細胞毒性分級在0~1之間,骨髓基質細胞可緊密附著于材料表面,黏附生長,并有突起向材料的連通微孔內伸展。【結論】 新型納米仿生骨植入材料對骨髓基質細胞無毒性作用,符合醫用生物材料的安全要求。

【關鍵詞】 仿生 復合材料 骨髓基質細胞 浸提液 生物相容性

Preliminarily Study of Novel Bionic Scaffold with Nanostructure:Biocompatibility in Vitro

Abstract: 【Objective】 To study the biocompatibility of novel bionic scaffold with nanostructure in vitro. 【Methods】 Marrow stroma cells (MSC) were cultured with extracting solution of the novel bionic scaffold. Cell relative growth rate (RGR) measured by MTT methods was used as a quantitative assessment for cytotoxicity of the biomaterials. Adherency and spreading of MSCs on the surface of specimen, using direct contact cultivation, was observed by SEM. 【Results】 The toxicity gradation of the novel bionic scaffold ranked from grade 0 to grade 1. MSCs attached and then adhered firmly on the surface of the biomaterials, and proliferated rapidly. Obvious cell prominencies stretched into the micro-pores structure. 【Conclusion】 The results suggest that the novel bionic scaffold have no cytotoxicity to MSCs and accord with the security standards of medical biomaterials.

Key words: bionic; composites; bone marrow stromal cells; extract liquid; biocompatibility

新型生物材料的生物相容性是影響其臨床應用的主要因素,材料的孔徑形狀、大小以及孔隙率對引導細胞的附著、侵潤和生長有著重要的作用[1, 2],由于本實驗材料需要植入體內與骨組織緊密接觸,因此材料的骨細胞相容性是本研究的主要內容。本實驗采用骨髓基質細胞的體外培養技術對新研制的新型納米仿生骨植入材料(PHBV/SGBG)進行了初步評價,為今后進一步的研究提供實驗依據。

1 材料和方法

1.1 材料與儀器

新型納米仿生骨植入材料:3-羥基丁酸-co-3-羥基戊酸共聚物/溶膠-凝膠生物活性玻璃 [poly(3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate)/ sol gel bioactiveglass,PHBV/SGBG](華南理工大學材料學研究所提供)。

主要儀器和設備:醫用超凈工作臺、CO2培養箱、臺式離心機、酶聯免疫檢測儀、倒置相差顯微鏡(中山三院中心實驗室提供);XL-30/DX-4I掃描電鏡/能譜分析儀(PHLIPS)(信息產業部電子五所國防科技重點實驗室提供)。

主要試劑和材料:DMEM培養液(Gbico)、胎牛血清(Sigma)、胰蛋白酶(PAA)、MTT(Gbico)等(購自晶美生物制品公司)。

1.2 實驗方法

1.2.1 PHBV/SGBG材料的掃描電鏡觀察 常規干燥、表面噴金,進行SEM檢查,直接觀察材料的結構、多孔形態、孔徑和孔的貫通性。

1.2.2 PHBV/SGBG材料的孔隙率測定

采用常規稱量法[3],計算材料的孔隙率。

1.2.3 骨髓基質細胞的原代培養及傳代

采用全骨髓培養法(直接貼壁法)進行原代培養,取傳代生長良好的2 ~ 4代細胞制作細胞生長曲線。

1.2.4 PHBV/SGBG植入材料浸提液的制備

PHBV/SGBG植入材料用環氧乙烷消毒備用,確定材料浸提液的標準濃度為培養液與材料表面積之比:10 mL/cm2,將支架材料浸入完全培養液中,標準條件下(37 ℃,5% CO2,飽和濕度)的培養箱中浸提2 ~ 3 d,吸出浸提液,無菌封存,4 ℃保存備用。同樣方法制備8倍、4倍、2倍、1倍、0.5倍、0.25倍標準濃度的浸提液。

1.2.5 MTT法評價材料的毒性分級

根據已繪制的細胞生長曲線,確定本實驗的細胞接種濃度和接種的細胞數量,測定不同浸提液濃度分組的細胞相對增殖率(relative growth rate,RGR),按5級毒性分級法評分:0級RGR≥100%;1級RGR≥80%;2級RGR≥50%;3級RGR≥30%;4級RGR≥0。

1.2.6 PHBV/SGBG植入材料的細胞相容性

將PHBV/SGBG植入材料用高糖DMEM完全培養基浸泡3 d,使用前用無菌濾紙吸干,置于24孔板中。取生長狀態良好的第2 ~ 4代培養細胞,調整細胞濃度為5 × 105/mL,滴加于材料表面接種于支架材料上,每塊材料上接種細胞液200 ?滋L,靜置3 h后加入培養基至浸沒材料。2 ~ 3 d常規換液一次,分別于1 d、3 d、6 d將細胞-材料復合物用20 g/L或體積分數為3%戊二醛固定,乙醇逐級脫水,乙酸異內酯置換,臨界點干燥,表面噴金后掃描電鏡觀察。

2 結 果

2.1 PHBV/SGBG材料的結構

PHBV/SGBG材料呈白色,略有彈性,表面為泡沫多孔狀結構(圖1),掃描電鏡下見材料為疏松多孔結構,孔隙多并相互聯通,孔隙大小約100 ~ 300 ?滋m,其中可見納米級的SGBG顆粒鑲嵌或包裹在PHBV基體孔壁上(圖2)。

2.2 PHBV/SGBG材料的孔隙率 材料孔隙率的檢測結果顯示:ε> 90%

2.3 PHBV/SGBG骨植入材料的細胞毒性實驗

根據培養細胞的生長標準曲線,本研究PHBV/SGBG骨植入材料浸提液進行MTT細胞毒性分析的實驗分別在1 d、3 d、5 d分三次進行,在細胞培養的開始、進入快速增殖期、以及細胞數量達到極限值之前的三個時間段完成檢測。結果見表1,可見各濃度組不同時期的毒性分級均在0~1級之間。 SPSS11.5統計軟件分析研究結果顯示:隨著材料浸提液濃度的增高,OD值略有下降,但該變化并不具有顯著性差異(P > 0.05);高濃度的材料浸提液對細胞生長的影響與低濃度相比并不存在顯著性差異(P > 0.05);隨著培養時間的延長各實驗組細胞數量都明顯增加,1 d、3 d、5 d三個測試時間點上,各濃度組細胞增殖數OD值與對照組相比無明顯差異 (P > 0.05)。不同濃度材料浸提液組,在1、3、5天時檢測的OD值變化曲線圖顯示:各濃度組的OD值變化與對照組幾乎完全重疊。

2.4 PHBV/SGBG骨植入材料中細胞黏附和生長形態的觀察

細胞培養第1天,可見骨髓基質細胞在PHBV/SGBG材料表面緊密貼壁生長,呈長梭形或有長突起的扁平多角形,突觸舒展明顯,相鄰細胞胞體相連,并向材料孔隙中伸延(圖3A);細胞培養第3天,可見大量骨髓基質細胞在PHBV/SGBG材料表面黏附、增殖,胞體呈梭形、多角形,細胞生長密集的地方可見細胞堆積復層生長(圖3B);細胞培養第6天,仍可見骨髓基質細胞在PHBV/SGBG材料表面黏附、生長,細胞呈不規則形(圖3C)。

3 討 論

3.1 PHBV/SGBG充填材料的多孔結構與骨的生長

骨再生具有三個基本機制,即骨誘導、骨傳導和骨生成。骨傳導是指宿主骨床周圍的毛細血管和骨祖細胞、成軟骨細胞和成骨細胞長入骨缺損區,而植入材料則逐漸被宿主新骨組織替代的過程。研究發現具有類似自然骨的連通微孔結構的材料,可以支持和引導新生骨組織通過互相連通的孔道向材料的叢深生長,為骨組織的再生提供理想的支架結構[4]。孔徑、孔隙率以及孔的連通性是評價材料空間結構的幾個重要的指標。

本研究采用的PHBV/SGBG骨植入材料為疏松多孔結構,孔徑大小為100 ~ 300 μm,孔隙率 > 90%。孔隙多且孔孔之間互相連通,有助于新骨組織從材料表面長入內部和血液流通。同時大量的微孔以及較大的比表面積,不僅可使材料體積小,易降解,同時又能獲得足夠的機械強度,以滿足臨床治療的需要。

3.2 PHBV/SGBG骨植入材料的MTT毒性分析

材料的細胞毒性是評價生物材料與細胞之間相互作用的最重要的指標,而細胞相對增殖度(relative growth rate, RGR)則是材料細胞毒性評估中的一個重要參數[5]。本研究采用MTT法來計算細胞RGR,并將細胞相對增殖率換算成毒性分級1-5級,來評估實驗材料的細胞毒性[6]。研究結果顯示隨著材料浸提液濃度的增高,OD值有所下降,但該變化并不具有顯著性差異(P > 0.05),說明該材料浸提液濃度的提高并不抑制細胞的生長、增殖;隨著培養時間的延長,各實驗組細胞數量都明顯增加,在1d、3d、5d三個測試時間點上,各濃度組細胞增殖數OD值與對照組幾乎完全重疊,高濃度組的材料浸提液對細胞生長的影響與低濃度組相比并不存在顯著性差異(P > 0.05),說明該材料浸提液的細胞毒性并未出現濃度依賴性,即使是高濃度的材料浸提液在細胞培養的開始、進入快速增殖期、以及細胞數量達到極限值之前的三個具代表性的時間段,都是安全、無毒的;倒置顯微鏡下可見各組各個時期的細胞呈梭形,伸展充分,形態良好,細胞密度高,生長旺盛,可見大量分裂細胞,與對照組相比,無顯著性差異,說明各濃度組的細胞生長良好;各濃度組不同時期的毒性分級均在0~1級之間,說明該材料對骨髓基質細胞無細胞毒性作用,符合生物材料的醫用標準。 本研究的PHBV/SGBG骨植入材料共制備了終濃度為8倍、4倍、2倍、1倍、0.5倍、0.25倍、0.125倍標準濃度的7種浸提液,較全面地探討了該材料浸提液的細胞毒性。同時本研究根據材料植入體內部位和使用目的的要求,選擇骨髓基質細胞作為體外培養的實驗細胞,更好地模擬出了植入材料在體內骨組織中的真實情況,準確地反映出實驗材料的細胞毒性及其與骨髓基質細胞間的相互作用。

3.3 PHBV/SGBG骨植入材料的細胞相容性

觀察植入材料與細胞之間的相互作用是研究植入材料細胞相容性的重要內容,采用直接接觸的細胞培養法,可以直接觀察到細胞在材料表面貼附的情況,一旦材料中有毒性物質釋放時,細胞的形態、數量和增殖狀態會立即發生變化,為材料的細胞相容性提供最直觀的證據,其評價結果客觀、敏感和有效[7]。本研究結果顯示:骨髓基質細胞能緊密附著于PHBV/SGBG植入材料表面,貼附生長,并有突起向材料的連通微孔內伸展,增殖狀態良好,結果證實該材料具有優良的細胞親和性,這可能與材料的結構有關。由于PHBV/SGBG植入材料具有泡沫多孔狀結構,具有大小合適的孔徑、較高的孔隙率和類似自然骨的連通微孔結構,利于骨髓基質細胞的粘附生長、營養物質的滲入和廢物的排出,并促進其在材料上的遷移、分化和增殖。

【參考文獻】 Chang BS, Lee CK, Hong KS, et al. Osteoconduction at porous hydroxyapatite with various pore configurations[J]. Biomaterials, 2000,21(12):1291-1298. Cyster LA, Grant DM, Howdle SM, et al. The influence of dispersant concentration on the pore morphology of hydroxyapatite ceramics for bone tissue engineering[J]. Biomaterials, 2005,26(7):697-702. 任耀彬,鄭裕東,王迎軍,等. 用于骨組織工程的羥基丁酸-戊酸共聚物/生物活性玻璃復合多孔支架材料[J]. 高分子材料科學與工程,2003,19(4):196-199. Habibovic P, Yuan H, van der Valk CM, et al. 3D microenviron-ment as essential element for osteoinduction by biomaterials[J]. Biomaterials, 2005,26(17):3565-3575. Schweikl H, Schmalz G. Toxicity parameters for cytotoxicity testing of dental materials in two different mammalian cell lines [J]. Eur J Oral Sci, 1996, 104(3): 292-299. Sieuwerts AM, Klijn JG, Peters HA, et al. The MTT tetrazolium salt assay scrutinized: how to use this assay reliably to measure metabolic activity of cell cultures in vitro for the assessment of growth characteristics, IC50-values and cell survival [J]. Eur J Clin Chem Clin Biochem, 1995, 33(11): 813-823. Kudelska-Mazur D, Lewandowska-Szumiel M, Mazur M, et al. Osteogenic cell contact with biomaterials influences phenotype expression[J]. Cell Tissue Bank,2005,6(1):55-64.

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