關于多柔比星透明質酸納米顆粒對口腔鱗狀細胞癌作用
佚名
作者:張曉燕 金曉明 劉晨光
【摘要】 目的 探討多柔比星透明質酸納米顆粒于體外靶向殺傷口腔鱗狀細胞癌的作用。方法 在體外培養的口腔鱗狀細胞癌細胞中分別加入多柔比星濃度為0.5、1.0、5.0、10.0 mg/L的多柔比星透明質酸納米顆粒,利用體外細胞毒實驗四甲基偶氮唑藍(MTT)法檢測多柔比星透明質酸納米顆粒對腫瘤細胞的靶向殺傷作用;多柔比星濃度為5.0、10.0 mg/L時分別作用0、6、12、24、48 h后,利用流式細胞儀檢測其對腫瘤細胞凋亡影響。結果24、48 h 細胞毒實驗顯示,多柔比星透明質酸納米顆粒對腫瘤細胞的殺傷作用優于游離多柔比星(t=5.78~42.05,P<0.01)。相同濃度多柔比星透明質酸納米顆粒細胞凋亡百分率隨時間延長而升高(F=4 200.40、4 775.36,P<0.01),相同作用時間細胞凋亡率隨濃度增加而升高(t=12.06~20.08,P<0.05)。結論 多柔比星透明質酸納米顆粒可特異性識別腫瘤細胞,并實現其殺傷作用,而且隨時間延長殺傷作用增大。 【關鍵詞】 多柔比星;納米結構;腫瘤,鱗狀細胞;藥物釋放系統;藥物療法 多柔比星(ADM)是臨床常用的抗惡性腫瘤藥,但長期使用有很強的毒性作用[1]。納米生物材料可大大提高藥物載體的靶向性, 降低藥物的毒副作用[2]。將透明質酸(HA)與多柔比星聯合制成納米顆粒,可通過HA與透明質酸結合受體(RHAMM)及CD44的特異結合實現藥物的特異投放,從而提高藥物的靶向性,降低藥物的毒副作用。本研究旨在探討多柔比星透明質酸納米顆粒(AHAN)于體外靶向殺傷口腔鱗狀細胞癌的作用。 1 材料與方法 1.1 材料來源 人口腔鱗狀細胞癌細胞株由上海第九人民醫院陳萬濤教授惠贈,AHAN由劉晨光教授惠贈。 1.2 儀器與試劑 1640培養基(上海卓康生物科技有限公司),新生小牛血清(中國杭州四季青生物工程公司),注射用多柔比星(每瓶10 mg,浙江海正藥業股份有限公司),胰蛋白酶、四甲基偶氮唑藍(MTT,Sigma公司),倒置相差顯微鏡(日本奧林巴斯公司),Rainbow酶聯免疫酶標測定儀(奧地利Tecan公司),流式細胞儀(美國BD公司)。 1.3 方法 1.3.1 細胞的培養 將口腔鱗狀細胞癌細胞接種于含體積分數0.10小牛血清的RPMI 1640 培養基中,置于37 ℃、體積分數0.05的CO2孵箱中培養,用胰酶消化傳代。取對數生長期的細胞用于實驗。 1.3.2 AHAN溶液配制 細胞加藥前取1 mg的AHAN溶于1 mL雙蒸水,浸泡24 h,超聲粉碎顆粒,此時ADM濃度為156 mg/L,高壓滅菌備用。 1.3.3 細胞形態學觀察及MTT比色法培養 將檢測細胞以5×107/L 接種到96 孔培養板中,每孔均為0.1 mL,待細胞生長融合為單層后, 分別加入AHAN(AHAN組)、游離ADM(游離ADM組) 和RPMI 1640工作液(空白對照組),AHAN、ADM組按ADM濃度分別為0.5、1.0、5.0、10.0 mg/L設4組,每組設4個平行組。空白對照組加等量RPMI 1640工作液。分別培養24、48 h 后于倒置顯微鏡下觀察細胞形態的改變。MTT 法計算存活率,細胞存活率=試驗組吸光度值/對照組吸光度值×100%,測定波長為570 nm。 1.3.4 流式細胞儀測定細胞凋亡率 將細胞以1×108/L接種于6孔板中,待細胞貼壁后,分別將5、10 mg/L的HAADMSSL作用于細胞0、6、12、24、48 h后,將細胞用2.5 g/L胰酶EDTA消化、離心收集,0.01 mol/L PBS (pH 7.4)洗2次,3 000 r/min 離心5 min,體積分數0.70冷乙醇固定細胞,加含RNA酶PI染液4 ℃作用30 min,過網,調細胞濃度至109/L,流式細胞術檢測細胞凋亡率。 1.4 統計學處理 采用SPSS 10.0及PPMS 1.5[3]統計分析軟件對數據進行統計學處理,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05認為差異具有統計學意義。 2 結果 2.1 各組細胞形態的變化 加藥24 h后,空白對照組細胞形態無明顯變化;游離ADM組和AHAN組均可見部分鱗狀細胞癌細胞收縮,細胞變小變圓,有突起相互牽連,在細胞表面出現多數暗色顆粒,AHAN組同時可見細胞散在脫落。加藥48 h后,游離ADM組可見細胞多數收縮, AHAN組可見細胞幾乎完全脫落,呈散在存在。 2.2 各組細胞存活率比較 培養24、48 h兩組相同濃度細胞存活率比較差異有顯著性(t=5.78~42.05,P<0.01)。見表1。 2.3 流式細胞術檢測 相同濃度的AHAN細胞凋亡率隨時間延長而升高(F=4 200.40、4 775.36,P<0.01),濃度為5.0、10.0 mg/L作用0 h兩組間細胞凋亡率無顯著差異(t=0.20,P>0.05),分別作用6、12、24、48 h兩組凋亡率差異有顯著性(t=12.06~20.08,P<0.05)。見表2。 表1 兩組培養24、48 h細胞存活率比較(略) 表2 不同濃度的AHAN對口腔鱗狀細胞癌細胞凋亡率的影響(略)
[2]YANG K, WEN Y, WANG C. Clinical application of anticancer nanoparticles targeting metastasis foci of cervical lymph nodes in patients with oral carcinoma[J]. Hua Xi Kou Qiang Yi Xue Za Zhi, 2003,21(6):447450.
[3]周曉彬,紀新強,徐莉. 醫用統計學軟件PPMS 1.5的組成和應用特點[J]. 齊魯醫學雜志, 2009,24(1):2932.
[4]ERKKI K, WADIH A, DANIEL R, et al. Identification of receptor ligands with phage display peptide libraries[J]. JNucl Med, 1999,40:883888.
[5]NICOLE L W, WAN H. Characterization of CD44V6 is forms in Headandneck squamous cell carcinoma[J]. Int J Cancer, 1999,82:837845.
[6]仝向娟,唐瞻貴,張雷,等. 口腔鱗狀細胞癌中RHAMMmRNA的表達研究[J]. 臨床口腔醫學雜志, 2005,4(21):199200.
[7]ANDERSON D G, PENG W, AKINC A, et al. A polymer library proach to suicide gene therapy for cancer[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2004,101(45):1602816033.
[8]PARK J W. Liposomebased drug delivery in breast cancer treatment[J]. Breast Cancer Res Treat, 2002,4(3):9599.