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加急見刊

關于HPLC-ELSD法測定麥冬藥材及其提取物中果糖的含量

王志斌,陳有根,李慧

【摘要】 目的 測定不同產地的川麥冬、浙麥冬藥材及麥冬提取物中果糖的含量,為麥冬藥材及其提取物的質量控制提供科學依據。方法 采用HPLC-ELSD法測定麥冬藥材及提取物中果糖的含量。結果 川麥冬和浙麥冬藥材中果糖的含量分別為11.32%~19.96%、3.85%~10.19%,川麥冬和浙麥冬提取物中果糖的含量分別為23.48%~25.82%、21.39%~23.29%。結論 川麥冬藥材中果糖的含量明顯高于浙麥冬藥材,川麥冬提取物中果糖含量與浙麥冬提取物基本一致。

【關鍵詞】 麥冬;麥冬提取物;果糖;含量測定

Abstract:Objective To determine the content of fructose in radix ophiopogonis cropped in Sichuan and Zhejian, and in extracts of radix ophiopogonis. Methods A HPLC-ELSD method was used for determining the content of fructose. Results The content of fructose in radix ophiopogonis cropped in Sichuan and Zhejiang were 11.32%~19.96% and 3.85%~10.19%, respectively. The contents of fructose in extracts of radix ophiopogonis cropped in Sichuan and Zhejiang were 23.48%~25.82% and 21.39%~23.29%, respectively. Conclusion The content of fructose in radix ophiopogonis cropped in Sichuan was higher than that of in Zhejiang. The content of fructose in extracts of radix ophiopogonis cropped in Sichuan was almost the same as that of in Zhejiang.Key words:radix ophiopogonis;extract of radix ophiopogonis;fructose 麥冬為常用中藥,來源于百合科植物麥冬Ophiopogon ja ponicus (Thunb.) Ker-Gawl.的干燥塊根,具有養陰生津、潤肺清心的功能。麥冬是生產多種中成藥制劑的原料,麥冬提取物是生產生脈注射液和參麥注射液的中間原料。

麥冬藥材及麥冬提取物主含甾體皂苷類、高異黃酮類和糖類化合物。目前,關于麥冬藥材質量控制的研究報道主要是控制麥冬皂苷D或B的含量,未見關于果糖的含量測定報道。盡管尚未證實果糖是麥冬藥材及其制劑的主要有效成分,但由于果糖是麥冬藥材及相關制劑中的主要化學成分之一,其含量遠高于目前已知麥冬藥材中的各種有效成分,因此,測定麥冬藥材及含麥冬的中成藥中果糖的含量,有利于生產者和使用者更多地了解相關產品中的組成成分,達到放心用藥的目的。

1 儀器與試藥

Agilent-1100高效液相色譜儀,四元泵,自動進樣器,柱溫箱,DAD二極管陣列檢測器,Agilent A10.02工作站。Alltech 2000ES型蒸發光散射檢測器(簡稱ELSD)。

果糖對照品購于中國藥品生物制品檢定所,為含量測定用;麥冬藥材采自浙江省慈溪縣和四川省三臺縣。乙腈為色譜純,其它試劑均為分析純。

2 方法與結果

2.1 色譜條件

色譜柱:Inertsil-NH2(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相:乙腈-水(78∶22);流速:1 mL/min;柱溫:30 ℃;ELSD檢測器氣流速度2.2 L/min,漂移管溫度85 ℃。

2.2 供試品溶液的制備

2.2.1 麥冬藥材供試品溶液的制備

取麥冬藥材細粉適量(川麥冬約0.3 g,浙麥冬約0.5 g),精密稱定,置50 mL量瓶中,加70%乙醇至刻度,冷浸24 h,期間振搖數次,濾過,精密量取 5 mL,置10 mL量瓶中,加70%乙醇至刻度,搖勻,制得供試品溶液,微孔濾膜濾過,取續濾液,備用。

2.2.2 麥冬提取物供試品溶液的制備

取麥冬藥材500 g,照部頒標準生脈注射液[1]中麥冬的處理方法,用水煎煮3次,每次40 min,用水量分別為8、6、4倍,水煎液合并、濾過、濃縮,用乙醇沉淀2次,分別使含醇量達70%、85%,醇沉液濃縮成稠膏,得麥冬提取物(流浸膏)。取麥冬提取物0.25 g,精密稱定,置50 mL量瓶中,加70%乙醇至刻度,振搖使完全溶解,制得麥冬提取物供試品溶液,微孔濾膜濾過,取續濾液,備用。

2.3 系統適應性

在上述色譜條件下測定,結果表明,理論塔板數以果糖峰計算為5 900(見圖1)。

2.4 線性關系考察

精密稱取果糖適量,加70%乙醇制成每1 mL含果糖1.484 mg的對照品溶液。精密吸取0.5、1、2、3、4、5 mL,分別置10 mL量瓶中,加70%乙醇至刻度,搖勻,制成系列對照品溶液。按上述色譜條件進樣10 μL,以進樣量的自然對數(lnW)為橫坐標,峰面積的自然對數(lnA)為縱坐標計算,得果糖的回歸方程為:lnA= 1.308 6lnW+7.946 4,r=0.999 6,線性范圍為0.728~7.280 μg。

2.5 精密度試驗

取含量為0.296 8 mg/mL的果糖對照品溶液,連續進樣5次,每次10 μL,以果糖的峰面積計算進樣精密度,RSD為1.24%。

2.6 重復性試驗

取1號麥冬藥材細粉,按供試品溶液制備方法制備5份供試液,依法測定,計算得果糖平均含量為18.46%(RSD=1.06%)。

2.7 穩定性試驗

取同一份麥冬藥材供試品溶液,每隔2 h進樣測定,結果5次測定果糖的峰面積基本不變,RSD為0.96 %,表明供試品溶液在8 h內穩定。

2.8 加樣回收率試驗

(見表1)表1 果糖加樣回收率試驗結果(略) 取已測定含量的1號麥冬藥材細粉0.25 g,5份,精密稱定,分別置50 mL量瓶中,加70%乙醇至刻度,冷浸24 h,期間振搖數次,濾過,分別精密量取5 mL,置25 mL量瓶中,分別加入含果糖1.21 mg/mL的對照品溶液4 mL,再加70%乙醇至刻度,冷浸24 h,期間振搖數次,制得供試品溶液,微孔濾膜濾過,取續濾液,分別進樣,計算果糖的平均回收率,結果為99.20%(RSD= 0.52%)。

2.9 樣品測定

取麥冬藥材細粉和麥冬提取物,按2.2項下操作制備供試品溶液,按上述色譜條件測定含量,結果見表2、表3。表2 麥冬藥材中果糖含量測定結果(略)注:1~10為四川省三臺縣,11~20為浙江省慈溪縣。表3 麥冬提取物中果糖含量測定結果(略)

3 討論

在實驗過程中,曾經用木糖、果糖、葡萄糖、鼠李糖、阿拉伯糖、蔗糖和乳糖為對照品,進行HPLC檢測,結果表明,在供試品的色譜圖中,除在與果糖保留時間對應的位置檢測到明顯的色譜峰外,在與木糖、鼠李糖、阿拉伯糖和乳糖保留時間對應的位置未檢測到色譜峰,在保留時間與葡萄糖和蔗糖對應的位置僅分別檢測到一個很小的色譜峰,說明麥冬藥材中的單糖與二糖是以果糖為主要組成成分。實驗結果表明,麥冬中果糖的含量高達藥材總重的20%。

盡管川麥冬藥材中果糖的含量遠高于浙麥冬藥材,但由于用兩種藥材生產提取物的得率不一致,川麥冬提取物的得率約為浙麥冬提取物的1.5~2.5倍,因此,兩種提取物中果糖的含量基本接近。 本研究用HPLC-ELSD方法測定了麥冬提取物中21.39%~25.82%的化學成分含量,結果可以為含麥冬的中藥注射劑的質量控制提供有用的控制參數。本測定方法也可以為其他中藥注射劑的質量控制提供參考。

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